izmertechИзмерительная техникаIzmeritel`naya Tekhnika0368-10252949-5237ФГУП "ВНИИФТРИ"10.32446/0368-1025it.2025-5-77-87izmertech-2351Research ArticleНАНОМЕТРОЛОГИЯРанняя диагностика почечно-клеточного рака: использование нанопроволочного биосенсора для обнаружения малой ядрышковой рибонуклеиновой кислоты SNORA77 в крови пациентаEarly diagnosis of renal cell carcinoma: use of a nanowire biosensor for detection of small nucleolar ribonucleic acid SNORA77 in patient’s bloodhttps://orcid.org/0000-0001-5041-1914ИвановЮ. Д.IvanovYu. D.

Юрий Дмитриевич Иванов, заведующий лабораторией нанобиотехнологии, д.б.н., профессор

Москва

Yuri D. Ivanov, Doctor of Biological Sciences, Professor, Head of Laboratory of Nanobiotechnology

Moscow

yurii.ivanov.nata@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0002-4082-1247ГолдаеваК. В.GoldaevaK. V.

Кристина Витальевна Голдаева, младший научный сотрудник

Москва

Kristina V. Goldaeva, Junior Scientist

Moscow

goldaeva_1996@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0003-2767-2299НеведроваЕ. Д.NevedrovaE. D.

Екатерина Дмитриевна Неведрова, младший научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии

Москва

Ekaterina D. Nevedrova, Junior Scientist, Laboratory of Nanobiotechnology

Moscow

nevedrova.kat@yamdex.ruhttps://orcid.org/0009-0001-6044-3490ВиноградоваА. В.VinogradovaA. V.

Ангелина Владимировна Виноградова, младший научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии

Москва

Angelina V. Vinogradova, Junior Scientist, Laboratory of Nanobiotechnology

Moscow

angel.tomlinson@yandex.ruhttps://orcid.org/0009-0004-3096-107XАблеевА. Н.AbleevA. N.

Иван Дмитриевич Шумов, ведущий инженер лаборатории нанобиотехнологии

Москва

Alexander N. Ableev, Leading Engineer, Laboratory of Nanobiotechnology

Moscow

ableev@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-9795-7065ШумовИ. Д.ShumovI. D.

Иван Дмитриевич Шумов, научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии ИБМХ, к.б.н.

Москва

Ivan D. Shumov, Ph.D. in Biology, Scientist, Laboratory of Nanobiotechnology

Moscow

shum230988@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-2117-8743КозловА. Ф.KozlovA. F.

Андрей Федорович Козлов, ведущий инженер лаборатории нанобиотехнологии

Москва

Andrey F. Kozlov, Leading Engineer,  Institute of Biomedical Chemistry

Moscow

afkozlow@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-5119-9449КапустинаС. И.KapustinaS. I.

Светлана Ивановна Капустина, лаборант лаборатории нанобиотехнологии

Москва

Svetlana I. Kapustina, Laboratory Assistant, Institute of Biomedical Chemistry

Moscow

sveta.kapustina7.05@gmail.comАфонинО. Н.AfoninO. N.

Олег Николаевич Афонин, старший научный сотрудник лаборатории нанобиотехнологии, к.т.н.

Москва

Oleg N. Afonin, Ph.D. in Technics, Scientist, Laboratory of Nanobiotechnology

Moscow

sunweb@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-7415-1405ПоповВ. П.PopovV. P.

Владимир Павлович Попов, д-р физ.-мат. наук, заведующий лабораторией физических основ материаловедения кремния

Новосибиpск

Vladimir P. Popov, D.Sc., Head of the Laboratory of Physical Fundamentals of Silicon Materials Science

Novosibirsk

popov@isp.nsc.ruhttps://orcid.org/0009-0008-3528-7060ГлуховА. В.GlukhovA. V.

Александр Викторович Глухов, заместитель генерального директора по научной работе

Новосибиpск

Nikolay E. Kushlinskii, Deputy General Director for Scientific Affairs

Novosibirsk

gluhov@nzpp.ruhttps://orcid.org/0000-0002-3898-4127КушлинскийН. Е.KushlinskiiN. E.

Николай Евгеньевич Кушлинский, д-р мед. наук, профессор, Академик РАН, научный руководитель лаборатории клинико-диагностической консультативно-диагностического центра

Москва

Nikolay E. Kushlinskii, Doctor of Med. Sci., Professor, Academician of the Russian Academy of Sciences, Scientific director of the clinical diagnostic laboratory of the of the consultative and diagnostic center

Moscow

kne3108@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0003-1490-8418СтилидиИ. С.StilidiI. S.

Иван Сократович Стилиди, д-р мед. наук, профессор, Академик РАН, д-р мед. наук, профессор, академик РАН, директор

Москва

Ivan S. Stilidi, Academician of the Russian Academy of Sciences, D.Sc., Professor, Director

Moscow

biochimia@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0001-7748-9527МатвеевВ. Б.MamedliZ. Z.

Всеволод Борисович Матвеев

Новосибиpск

Vsevolod B. Matveev, D.Sc., Associate Professor, Head of the Department of Abdominal Oncology No. 3 (coloproctology)

Moscow

vsevolodmatveev@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-7169-2209ЕникеевД. В.EnikeevD. V.

Дмитрий Викторович Еникеев, д-р мед. наук, профессор, Институт урологии и репродуктивного здоровья человека

Москва

Dmitry V. Enikeev, D.Sc., Professor

Moscow

dvenikeev@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0001-9947-9725БурундаеваН. В.BurundaevaN. N.

Наталья Валерьевна Бурундаева

Москва

Natalia V. Burundaeva

Moscow

natalis8282@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-1566-1771КоневВ. А.KonevV. A.

Владимир Александрович Конев, канд. мед. наук, доцент кафедры инфекционных болезней у детей педиатрического факультета

Москва

Vladimir A. Konev, Ph.D. in Medical Sciences, Associate Professor of Department of Infectious Diseases in Children, Faculty of Pediatrics

Moscow

konev60@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0003-0273-6700КовалевО. Б.KovalevO. B.

Олег Борисович Ковалев, д-р мед. наук., профессор кафедры инфекционных болезней у детей педиатрического факультета

Москва

Oleg B. Kovalev, Doctor of Medical Sciences, Professor of Department of Infectious Diseases in Children, Faculty of Pediatrics

Moscow

doctor87@list.ruhttps://orcid.org/0000-0002-6415-5189ТатурВ. Ю.TaturV. Y.

Вадим Юрьевич Татур, исполнительный директор Фонда перспективных технологий и новаций

Москва

Vadim Yu. Tatur, Executive Director

Moscow

v_tatur@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-7942-3337ЗиборовВ. С.ZiborovV. S.

Вадим Серафимович Зиборов, канд. физ.-мат. наук, старший научный сотрудник лаборатории №6.2. – ударно-волновых воздействий

Москва

Vadim S. Ziborov, Ph.D., Senior Scientist, Laboratory of Shock-Wave Impacts

Moscow

ziborov.vs@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-3549-3736ГришинЛ. И.GrishinL. I.

Леонид Игоревич Гришин, научный сотрудник лаборатории №6.2. – ударно-волновых воздействий

Москва

Leonid I. Grishin, Scientist, Laboratory of Shock-Wave Impacts

Moscow

lenya-grishin@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-7054-7341ДолгобородовА. Ю.DolgoborodovA. Y.

Александр Юрьевич Долгобородов, д-р физ.-мат. наук, заведующий лабораторией №6.2. – ударно-волновых воздействий

Москва

Alexander Yu. Dolgoborodov, D.Sc., Head of Laboratory of Shock-Wave Impacts

Moscow

aldol@ihed.ras.ruhttps://orcid.org/0000-0002-6373-0305ПетровО. Ф.PetrovO. F.

Олег Федорович Петров, д-р физ.-мат. наук, Академик РАН, директор

Москва

Oleg F. Petrov, Academician of the Russian Academy of Sciences, D.Sc., Director

Moscow

ofpetrov@ihed.ras.ruhttps://orcid.org/0000-0002-0943-9488НовиковС. В.NovikovS. V.

Сергей Васильевич Новиков, канд. техн. наук, заместитель генерального директора

Москва

Sergey V. Novikov, Ph.D. in Technics, Deputy General Director, Associate Printing-and-Publication Centre Technosphera

Moscow

svnovikov59@mail.ruhttps://orcid.org/0009-0002-9161-0877ЮшковЕ. С.YushkovE. S.

Евгений Семенович Юшков, канд. техн. наук, доцент кафедры № 71

Москва

Evgeniy S. Yushkov, Ph.D. in Technics, Associate Professor of Department No. 71

Moscow

esyushkov@mephi.ruhttps://orcid.org/0000-0002-2290-8090АрчаковА. И.ArchakovA. I.

Александр Иванович Арчаков, -р биол. наук, Академик РАН, профессор, научный руководитель

Москва

Alexander I. Archakov, Academician of the Russian Academy of Sciences, D.Sc., Professor

Moscow

alexander.archakov@ibmc.msk.ruНаучно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. ОреховичаРоссияInstitute of Biomedical Chemistry (IBMC)Russian FederationНаучно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. ОреховичаРоссияInstitute of Biomedical ChemistryRussian FederationФедеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В.Н. Ореховича»РоссияInstitute of Biomedical Chemistry (IBMC)Russian FederationФедеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В.Н. Ореховича»РоссияInstitute of Biomedical ChemistryRussian FederationИнститут физики полупроводников им. А. В. Ржанова Сибирского отделения Российской академии наукРоссияRzhanov Institute of Semiconductor Physics, Siberian Branch of Russian Academy of SciencesRussian FederationНовосибирский завод полупроводниковых приборов ВостокРоссияNovosibirsk Plant of Semiconductor Devices VostokRussian FederationФедеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н.Н. Блохина» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияFederal State Budgetary Institution «N.N. Blokhin National Medical Research Center of Oncology» of the Russian Ministry of HealthRussian FederationНациональный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н. Н. Блохина Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияN. N. Blokhin National Medical Research Center of Oncology оf the Ministry of Health of the Russian FederationRussian FederationПервый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)РоссияSechenov UniversityRussian FederationФедеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации г. МоскваРоссияPirogov Russian National Research Medical UniversityRussian FederationРоссийский национальный исследовательский медицинский университет имени Н. И. Пирогова Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияPirogov Russian National Research Medical UniversityRussian FederationФонд перспективных технологий и новацийРоссияFoundation of Perspective Technologies and NovationsRussian FederationОбъединённый институт высоких температур Российской академии наукРоссияJoint Institute for High Temperatures of the Russian Academy of SciencesRussian FederationФедеральное государственное бюджетное учреждение науки Объединенный институт высоких температур Российской академии наук (ОИВТ РАН)РоссияJoint Institute for High Temperatures of the Russian Academy of SciencesRussian FederationРекламно-издательский центр «Техносфера»РоссияAssociate Printing-and-Publication Centre TechnospheraRussian FederationНациональный исследовательский ядерный университет МИФИ (НИЯУ МИФИ)РоссияNational Research Nuclear University MEPhIRussian Federation2025141120257457787Copyright © ФГУП "ВНИИФТРИ", 20252025ФГУП "ВНИИФТРИ"ФГУП "ВНИИФТРИ"https://www.izmt.ru/jour/about/submissions#copyrightNoticehttps://www.izmt.ru/jour/article/view/2351

Почечно-клеточный рак – наиболее распространённая форма рака почки (более 90 % всех онкологических патологий почки). На ранней стадии развития почечно-клеточный рак может протекать бессимптомно, что существенно затрудняет диагностику. Существующие методы диагностики почечно-клеточного рака не позволяют своевременно выявлять это заболевание на ранних стадиях, поэтому необходимо разработать эффективные и неинвазивные методы диагностики по обнаруживаемым в крови биологическим макромолекулам – биомаркерам рака данного типа. В качестве таких биологических макромолекул предложено использовать малые ядрышковые рибонуклеиновые кислоты. В настоящем исследовании спроектирован и изготовлен SiNW-биосенсор для прямого обнаружения в крови малой ядрышковой рибонуклеиновой кислоты SNORA77, ассоциированной с почечно-клеточным раком. Ключевым элементом разработанного SiNW-биосенсора является нанопроволочный чип на основе структур «кремний-на-изоляторе». Чип изготовлен по технологии, аналогичной Smart Cut, и содержит массив из кремниевых нанопроволок с проводимостью n-типа, на поверхность которых ковалентно иммобилизованы олигодезоксирибонуклеотидные зонды. Для обеспечения специфичности проводимого анализа нуклеотидная последовательность иммобилизованных олигодезоксирибонуклеотидных зондов комплементарна целевой детектируемой последовательности малой ядрышковой рибонуклеиновой кислоты SNORA77. Проанализированы очищенные буферные растворы с различными концентрациями синтетических олигодезоксирибонуклеотидных зондов, последовательность которых аналогична целевой детектируемой последовательности SNORA77. С помощью разработанного SiNW-биосенсора определён предел обнаружения SNORA77, составивший порядка 10–17 М. В образце, выделенном из плазмы крови пациента с подтверждённым диагнозом «почечно-клеточный рак», SiNW-биосенсор позволил выявить повышенный уровень SNORA77 по сравнению с контрольным образцом, выделенным из плазмы крови пациента с заболеванием неонкологической природы. Результаты исследования будут полезны для дальнейшей разработки систем ранней диагностики почечно-клеточного рака.

Renal cell carcinoma is the most common form of kidney cancer (more than 90 % of all oncological pathologies of the kidney). At an early stage of development, renal cell carcinoma can be asymptomatic, and this significantly complicates its diagnosis. Commonly used methods for diagnosing renal cell carcinoma do not allow for timely detection of this disease at early stages, thus it is necessary to develop effective and non-invasive methods for its diagnosis using biological macromolecules detectable in blood – biomarkers of this type of cancer. Small nucleolar RNAs are of great interest as such biological macromolecules. In this study, a SiNW biosensor was designed and manufactured for the direct detection of small nucleolar RNA SNORA77 in the blood, associated with renal cell carcinoma. The key element of the SiNW biosensor developed is a nanowire chip based on “siliconon- insulator” structures. The chip is manufactured using a technology similar to Smart Cut, and contains an array of silicon nanowires with n-type conductivity, on whose surface DNA oligonucleotide probes are covalently immobilized. To ensure the specificity of the analysis, the nucleotide sequence of the immobilized DNA probes is complementary to the target sequence of the small nucleolar RNA SNORA77. Purified buffer solutions containing various concentrations of synthetic DNA oligonucleotides, whose sequence is similar to the target detectable sequence of SNORA77, have been analyzed. Using the SiNW biosensor developed, the detection limit of SNORA77 was determined to be approximately 10–17 M. The SiNW biosensor has allowed us to detect an elevated level of SNORA77 in a sample isolated from the blood plasma of a patient with confirmed diagnosis of renal cell carcinoma in comparison with that in a control sample isolated from the plasma of a patient with a non-oncologic disease. The results of the study will be useful for further development of early diagnostic systems for renal cell carcinoma.

биосенсоркремниевая нанопроволокамалые ядрышковые рибонуклеиновые кислотыбиомаркерпочечно-клеточный ракbiosensorsilicon nanowiresmall nucleolar ribonucleic acidbiomarkerrenal cell carcinomaБиосенсорные измерения на нанопроволочном биосенсоре выполнены в рамках Программы фундаментальных научных исследований в Российской Федерации на долгосрочный период (2021–2030 годы) (№ 122030100168-2). Работа по подготовке биосенсорных чипов к анализу выполнена при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (Государственное задание № 075-00269-25-00).Biosensor measurements with the nanowire biosensor were performed within the framework of the Program for Basic Research in the Russian Federation for a long-term period (2021–2030) (no. 122030100168-2). The work on preparation of the biosensor chips for the analysis was supported by the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation (State Assignment no. 075-00269-25-00).ReferencesTran J., Ornstein M. C. Clinical review on the management of metastatic renal cell carcinoma. JCO Oncology Practice, 18(3), 187–196 (2022). https://doi.org/10.1200/OP.21.00419Tran J., Ornstein M. C. Clinical review on the management of metastatic renal cell carcinoma. JCO Oncology Practice, 18(3), 187–196 (2022). https://doi.org/10.1200/OP.21.00419Hsieh J. J. et al. Renal cell carcinoma. Nature Reviews Disease Primers, 3(1), 1–19 (2017). https://doi.org/10.1038/nrdp.2017.9Hsieh J. J. et al. Renal cell carcinoma. Nature Reviews Disease Primers, 3(1), 1–19 (2017). https://doi.org/10.1038/nrdp.2017.9Ljungberg B., Purdue M. P., Signoretti S. et al. European Association of Urology guidelines on renal cell carcinoma: the 2022 update. European Urology, 82(4), 399–410 (2022). https://doi.org/10.1016/j.eururo.2022.03.006Ljungberg B., Purdue M. P., Signoretti S. et al. European Association of Urology guidelines on renal cell carcinoma: the 2022 update. European Urology, 82(4), 399–410 (2022). https://doi.org/10.1016/j.eururo.2022.03.006Sung H., Ferlay J., Siegel R. L. et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: a Cancer Journal for Clinicians, 71(3), 209–249 (2021). https://doi.org/10.3322/caac.21660Sung H., Ferlay J., Siegel R. L. et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: a Cancer Journal for Clinicians, 71(3), 209–249 (2021). https://doi.org/10.3322/caac.21660Bosma N. A., Warkentin M. T., Gan C. L et al. Effi cacy and safety of fi rst-line systemic therapy for metastatic renal cell carcinoma: a systematic review and network meta-analysis. European Urology Open Science, 37, 14–26 (2022). https://doi.org/10.1016/j.euros.2021.12.007Bosma N. A., Warkentin M. T., Gan C. L et al. Effi cacy and safety of fi rst-line systemic therapy for metastatic renal cell carcinoma: a systematic review and network meta-analysis. European Urology Open Science, 37, 14–26 (2022). https://doi.org/10.1016/j.euros.2021.12.007Tenold M., Ravi P., Kumar M. et al. Current approaches to the treatment of advanced or metastatic renal cell carcinoma. American Society of Clinical Oncology Educational Book, 40, 187–196 (2020). https://doi.org/10.1200/EDBK_279881Tenold M., Ravi P., Kumar M. et al. Current approaches to the treatment of advanced or metastatic renal cell carcinoma. American Society of Clinical Oncology Educational Book, 40, 187–196 (2020). https://doi.org/10.1200/EDBK_279881Motzer R. J., Bander N. H., Nanus D. M. Renal-cell carcinoma. New England Journal of Medicine, 335(12), 865–875 (1996). https://doi.org/10.1056/NEJM199609193351207Motzer R. J., Bander N. H., Nanus D. M. Renal-cell carcinoma. New England Journal of Medicine, 335(12), 865–875 (1996). https://doi.org/10.1056/NEJM199609193351207Gibbons R. P., Montie J. E., Correa Jr. R. J. et al. Manifestations of renal cell carcinoma. Urology, 8(3), 201–206 (1976). https://doi.org/10.1016/0090-4295(76)90366-6Gibbons R. P., Montie J. E., Correa Jr. R. J. et al. Manifestations of renal cell carcinoma. Urology, 8(3), 201–206 (1976). https://doi.org/10.1016/0090-4295(76)90366-6McLaughlin J. K., Lipworth L., Tarone R. E. Epidemiologic aspects of renal cell carcinoma. Seminars in oncology. WB Saunders, 33(5), 527–533 (2006). https://doi.org/10.1053/j.seminoncol.2006.06.010McLaughlin J. K., Lipworth L., Tarone R. E. Epidemiologic aspects of renal cell carcinoma. Seminars in oncology. WB Saunders, 33(5), 527–533 (2006). https://doi.org/10.1053/j.seminoncol.2006.06.010Padala S. A., Barsouk A., Thandra K. C. et al. Epidemiology of renal cell carcinoma. World Journal of Oncology, 11(3), 79 (2020). https://doi.org/10.14740/wjon1279Padala S. A., Barsouk A., Thandra K. C. et al. Epidemiology of renal cell carcinoma. World Journal of Oncology, 11(3), 79 (2020). https://doi.org/10.14740/wjon1279Wein A. J., Barsouk A., etc. Campbell-Walsh Urology, 11th ed. Elsevier Health Sciences, Philadelphia (2016).Wein A. J., Barsouk A., etc. Campbell-Walsh Urology, 11th ed. Elsevier Health Sciences, Philadelphia (2016).Vasudev N. S., Wilson M., Stewart G. D. et al. Challenges of early renal cancer detection: symptom patterns and incidental diagnosis rate in a multicentre prospective UK cohort of patients presenting with suspected renal cancer. BMJ Open, 10(5), e035938 (2020). https://doi.org/10.1136/bmjopen-2019-035938Vasudev N. S., Wilson M., Stewart G. D. et al. Challenges of early renal cancer detection: symptom patterns and incidental diagnosis rate in a multicentre prospective UK cohort of patients presenting with suspected renal cancer. BMJ Open, 10(5), e035938 (2020). https://doi.org/10.1136/bmjopen-2019-035938Wajahat M., Bracken C. P., Orang A. Emerging functions for snoRNAs and snoRNA-derived fragments. International Journal of Molecular Sciences, 22(19), 10193 (2021). https://doi.org/10.3390/ijms221910193Wajahat M., Bracken C. P., Orang A. Emerging functions for snoRNAs and snoRNA-derived fragments. International Journal of Molecular Sciences, 22(19), 10193 (2021). https://doi.org/10.3390/ijms221910193Huang Z., Du Y., Wen J, et al. SnoRNAs: functions and mechanisms in biological processes, and roles in tumor pathophysiology. Cell Death Discovery, 8(1), 259 (2022). https://doi.org/10.1038/s41420-022-01056-8Huang Z., Du Y., Wen J, et al. SnoRNAs: functions and mechanisms in biological processes, and roles in tumor pathophysiology. Cell Death Discovery, 8(1), 259 (2022). https://doi.org/10.1038/s41420-022-01056-8Lu B., Chen X., Liu X. et al. C/D box small nucleolar RNA SNORD104 promotes endometrial cancer by regulating the 2ʹ-O-methylation of PARP1. Journal of Translational Medicine, 20(1), 618 (2022). https://doi.org/10.1186/s12967-022-03802-zLu B., Chen X., Liu X. et al. C/D box small nucleolar RNA SNORD104 promotes endometrial cancer by regulating the 2ʹ-O-methylation of PARP1. Journal of Translational Medicine, 20(1), 618 (2022). https://doi.org/10.1186/s12967-022-03802-zChow R. D., Chen S. Sno-derived RNAs are prevalent molecular markers of cancer immunity. Oncogene, 37(50), 6442–6462 (2018). https://doi.org/10.1038/s41388-018-0420-zChow R. D., Chen S. Sno-derived RNAs are prevalent molecular markers of cancer immunity. Oncogene, 37(50), 6442–6462 (2018). https://doi.org/10.1038/s41388-018-0420-zMannoor K., Liao J., Jiang F. Small nucleolar RNAs in cancer. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Reviews on Cancer, 1826(1), 121–128 (2012). https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2012.03.005Mannoor K., Liao J., Jiang F. Small nucleolar RNAs in cancer. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Reviews on Cancer, 1826(1), 121–128 (2012). https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2012.03.005Yang S., Rothman R. E. PCR-based diagnostics for infectious diseases: uses, limitations, and future applications in acute-care settings. The Lancet Infectious Diseases, 4(6), 337–348 (2004). https://doi.org/10.1016/S1473-3099(04)01044-8Yang S., Rothman R. E. PCR-based diagnostics for infectious diseases: uses, limitations, and future applications in acute-care settings. The Lancet Infectious Diseases, 4(6), 337–348 (2004). https://doi.org/10.1016/S1473-3099(04)01044-8Ro S., Park C., Jin J. et al. A PCR-based method for detection and quantifi cation of small RNAs. Biochemical and Biophysical Research Communications, 351(3), 756–763 (2006). https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2006.10.105Ro S., Park C., Jin J. et al. A PCR-based method for detection and quantifi cation of small RNAs. Biochemical and Biophysical Research Communications, 351(3), 756–763 (2006). https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2006.10.105Yang T., Zhang M., Zhang N. Modifi ed Northern blot protocol for easy detection of mRNAs in total RNA using radiolabeled probes. BMC Genomics, 23(1), 66 (2022). https://doi.org/10.1186/s12864-021-08275-wYang T., Zhang M., Zhang N. Modifi ed Northern blot protocol for easy detection of mRNAs in total RNA using radiolabeled probes. BMC Genomics, 23(1), 66 (2022). https://doi.org/10.1186/s12864-021-08275-wIvanov Y. D., Romanova T.S., Malsagova K.A. et al. Use of silicon nanowire sensors for early cancer diagnosis. Molecules, 26(12), 3734 (2021). https://doi.org/10.3390/molecules26123734Ivanov Y. D., Romanova T.S., Malsagova K.A. et al. Use of silicon nanowire sensors for early cancer diagnosis. Molecules, 26(12), 3734 (2021). https://doi.org/10.3390/molecules26123734Ambhorkar P., Wang Z., Ko H. et al. Nanowire-based biosensors: from growth to applications. Micromachines, 9(12), 679 (2018). https://doi.org/10.3390/mi9120679Ambhorkar P., Wang Z., Ko H. et al. Nanowire-based biosensors: from growth to applications. Micromachines, 9(12), 679 (2018). https://doi.org/10.3390/mi9120679Kim K., Park C., Kwon D. et al. Silicon nanowire biosensors for detection of cardiac troponin I (cTnI) with high sensitivity. Biosensors and Bioelectronics, 77, 695–701 (2016). https://doi.org/10.1016/j.bios.2015.10.008Kim K., Park C., Kwon D. et al. Silicon nanowire biosensors for detection of cardiac troponin I (cTnI) with high sensitivity. Biosensors and Bioelectronics, 77, 695–701 (2016). https://doi.org/10.1016/j.bios.2015.10.008Ivanov Y. D., Malsagova K. A., Pleshakova T. O., et al. Aptamer-Sensitized nanoribbon biosensor for ovarian cancer marker detection in plasma. Chemosensors, 9(8), 222 (2021). https://doi.org/10.3390/chemosensors9080222Ivanov Y. D., Malsagova K. A., Pleshakova T. O., et al. Aptamer-Sensitized nanoribbon biosensor for ovarian cancer marker detection in plasma. Chemosensors, 9(8), 222 (2021). https://doi.org/10.3390/chemosensors9080222Ivanov Y., Pleshakova T., Malsagova K. et al. Detection of marker miRNAs, associated with prostate cancer, in plasma using SOI-NW biosensor in direct and inversion modes. Sensors, 19(23), 5248 (2019). https://doi.org/10.3390/s19235248Ivanov Y., Pleshakova T., Malsagova K. et al. Detection of marker miRNAs, associated with prostate cancer, in plasma using SOI-NW biosensor in direct and inversion modes. Sensors, 19(23), 5248 (2019). https://doi.org/10.3390/s19235248Ivanov Y. D., Malsagova K. A., Popov V. P. et al. Nanoribbon-based electronic detection of a glioma-associated circular miRNA. Biosensors, 11(7), 237 (2021). https://doi.org/10.3390/bios11070237Ivanov Y. D., Malsagova K. A., Popov V. P. et al. Nanoribbon-based electronic detection of a glioma-associated circular miRNA. Biosensors, 11(7), 237 (2021). https://doi.org/10.3390/bios11070237Иванов Ю. Д., Неведрова Е. Д., Виноградова А. В. и др. Детекция кольцевых РНК hsa_circ_0031263, hsa_circ_0072715 и hsa_circ_0136666, ассоциированных с колоректальным раком, в плазме крови с помощью нанопроводных чипов. Альманах клинической медицины, 52(3), 120–131 (2024)Ivanov Y. D., Nevedrova E. D., Vinogradova A. V. et al. Detection of colorectal cancer associated circular RNAs hsa_circ_0031263, hsa_circ_0072715, and hsa_circ_0136666 in plasma with nanowire chips. Almanac of Clinical Medicine, 52(3), 120–131 (2024). (In Russ.)]. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2024-52-016Patolsky F., Zheng G., Hayden O. et al. Electrical detection of single viruses. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 101(39), 14017–14022 (2004). https://doi.org/10.1073/pnas.0406159101Patolsky F., Zheng G., Hayden O. et al. Electrical detection of single viruses. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 101(39), 14017–14022 (2004). https://doi.org/10.1073/pnas.0406159101Malsagova K. A., Pleshakova T. O., Kozlov A. F. et al. Detection of infl uenza virus using a SOI-nanoribbon chip, based on an N-type fi eld-effect transistor. Biosensors, 11(4), 119 (2021). https://doi.org/10.3390/bios11040119Malsagova K. A., Pleshakova T. O., Kozlov A. F. et al. Detection of infl uenza virus using a SOI-nanoribbon chip, based on an N-type fi eld-effect transistor. Biosensors, 11(4), 119 (2021). https://doi.org/10.3390/bios11040119Popov V. P., Antonova A. I., Frantsuzov P. A. et al. Properties of silicon-on-insulator structures and devices. Semiconductors, 35, 1030–1037 (2001). https://doi.org/10.1134/1.1403567Popov V. P., Antonova A. I., Frantsuzov P. A. et al. Properties of silicon-on-insulator structures and devices. Semiconductors, 35, 1030–1037 (2001). https://doi.org/10.1134/1.1403567Ivanov Y., Pleshakova T., Malsagova K. et al. Detection of marker miRNAs, associated with prostate cancer, in plasma using SOI-NW biosensor in direct and inversion modes. Sensors, 19(23), 5248 (2019). https://doi.org/10.3390/s19235248Ivanov Y., Pleshakova T., Malsagova K. et al. Detection of marker miRNAs, associated with prostate cancer, in plasma using SOI-NW biosensor in direct and inversion modes. Sensors, 19(23), 5248 (2019). https://doi.org/10.3390/s19235248Mattson G., Conklin E., Desai S. et al. A practical approach to crosslinking. Molecular Biology Reports, 17, 167–183 (1993). https://doi.org/10.1007/BF00986726Mattson G., Conklin E., Desai S. et al. A practical approach to crosslinking. Molecular Biology Reports, 17, 167–183 (1993). https://doi.org/10.1007/BF00986726Stern E., Wagner R., Sigworth F. J. et al. Importance of the Debye screening length on nanowire fi eld effect transistor sensors. Nano Letters, 7(11), pp. 3405–3409 (2007). https://doi.org/10.1021/nl071792zStern E., Wagner R., Sigworth F. J. et al. Importance of the Debye screening length on nanowire fi eld effect transistor sensors. Nano Letters, 7(11), pp. 3405–3409 (2007). https://doi.org/10.1021/nl071792zLaborde C., Pittino F., Verhoeven H. A. et al. Real-time imaging of microparticles and living cells with CMOS nanocapacitor arrays. Nature Nanotechnology, 10(9), pp. 791–795 (2015). https://doi.org/10.1038/nnano.2015.163Laborde C., Pittino F., Verhoeven H. A. et al. Real-time imaging of microparticles and living cells with CMOS nanocapacitor arrays. Nature Nanotechnology, 10(9), pp. 791–795 (2015). https://doi.org/10.1038/nnano.2015.163Namdari P., Daraee H., Eatemadi A. Recent advances in silicon nanowire biosensors: synthesis methods, properties, and applications. Nanoscale Research Letters, 11, 1–16 (2016). https://doi.org/10.1186/s11671-016-1618-zNamdari P., Daraee H., Eatemadi A. Recent advances in silicon nanowire biosensors: synthesis methods, properties, and applications. Nanoscale Research Letters, 11, 1–16 (2016). https://doi.org/10.1186/s11671-016-1618-zZhang H., Kikuchi N., Ohshima N. et al. Design and fabrication of silicon nanowire-based biosensors with integration of critical factors: toward ultrasensitive specifi c detection of biomolecules. American Chemical Society Applied Materials and Interfaces, 12(46), 51808–51819 (2020). https://doi.org/10.1021/acsami.0c13984Zhang H., Kikuchi N., Ohshima N. et al. Design and fabrication of silicon nanowire-based biosensors with integration of critical factors: toward ultrasensitive specifi c detection of biomolecules. American Chemical Society Applied Materials and Interfaces, 12(46), 51808–51819 (2020). https://doi.org/10.1021/acsami.0c13984Rissin D. M., Kan C. W., Campbell T. G. et al. Single-molecule enzyme-linked immunosorbent assay detects serum proteins at subfemtomolar concentrations. Nature Biotechnology, 28(6), 595–599 (2010). https://doi.org/10.1038/nbt.1641Rissin D. M., Kan C. W., Campbell T. G. et al. Single-molecule enzyme-linked immunosorbent assay detects serum proteins at subfemtomolar concentrations. Nature Biotechnology, 28(6), 595–599 (2010). https://doi.org/10.1038/nbt.1641Banerjee D., Tateishi-Karimata H., Ohyama T. et al. Improved nearest-neighbor parameters for the stability of RNA/DNA hybrids under a physiological condition. Nucleic Acids Research, 48(21), 12042–12054 (2020). https://doi.org/10.1093/nar/gkaa572Banerjee D., Tateishi-Karimata H., Ohyama T. et al. Improved nearest-neighbor parameters for the stability of RNA/DNA hybrids under a physiological condition. Nucleic Acids Research, 48(21), 12042–12054 (2020). https://doi.org/10.1093/nar/gkaa572SantaLucia J., Hicks D. The thermodynamics of DNA structural motifs. Annual Review of Biophysics, 33, 415–440 (2004). https://doi.org/10.1146/annurev.biophys.32.110601.141800SantaLucia J., Hicks D. The thermodynamics of DNA structural motifs. Annual Review of Biophysics, 33, 415–440 (2004). https://doi.org/10.1146/annurev.biophys.32.110601.141800

The authors declare that there are no conflicts of interest present.